聚丙烯酰胺凝胶DNA回收试剂盒参考价: ¥335
价格: ¥301
货品编号: DY6261
规格:
50T
|
聚丙烯酰胺凝胶DNA回收试剂盒 | ||||||||
PolyGel Extraction Kit | ||||||||
离心柱式 | ||||||||
Cat No:DY6261 | ||||||||
Kit Size:50T | ||||||||
产品组分 | ||||||||
组分 Contents | 50preps | |||||||
Buffer 1# | 100ml | |||||||
Buffer 2# | 30ml | |||||||
Buffer 3# | 15ml | |||||||
Buffer (concentrate) 4# | 10ml | |||||||
Buffer 5# | 10ml | |||||||
过滤柱 | 50 | |||||||
吸附柱 | 50 | |||||||
收集管 | 100 | |||||||
储运条件 | ||||||||
本试剂盒室温15℃-25℃条件下运输。 | ||||||||
说 明 | ||||||||
本产品仅供科研使用,请勿用于临床诊断及其他用途。 | ||||||||
产品简介 | ||||||||
本试剂盒采用新型硅基质膜及特殊的缓冲液系统,高效专一结合DNA,可从聚丙烯酰胺凝胶中高效回收DNA,并可最大限度去除引物、酶、矿物油等杂质,获得高纯度的DNA,满足多种实验要求。本试剂盒可回收50 bp-50 kb的DNA片段,能有效避免大片段DNA在纯化过程中被切断,每个吸附柱可最高吸附20 μg的DNA,且DNA回收效率高达90%。由本试剂盒回收纯化的DNA可直接用于酶切,连接,PCR扩增、DNA测序等分子生物学实验。 | ||||||||
实验前准备及注意事项 | ||||||||
1.本实验需要无水乙醇,离心管请自备。 | ||||||||
2.本试剂盒回收聚丙烯酰胺凝胶中 的DNA 片段,如需选择性琼脂糖凝胶中回收特定片段,同时去除其他不同大小片段,请选择我公司的胶回收试剂盒(LY6256, LY6257,LY6258 )。 | ||||||||
3.使用前请检查Buffer1#是否出现结晶或者沉淀,如有结晶或者沉淀现象,可在37℃水浴几分钟,即可恢复澄清。 | ||||||||
4.第一次使用前应按照试剂瓶标签的说明在Buffer 4#中加入无水乙醇。 | ||||||||
5. 回收率与初始DNA量和洗脱体积有关。 | ||||||||
6.切胶时,紫外照射时间应尽量短,以免对DNA造成损伤。 | ||||||||
7.电泳时最好使用新的电泳缓冲液,以免影响电泳和回收效果 | ||||||||
8..所有离心步骤均为使用台式离心机在室温下离心。 | ||||||||
操作步骤 | ||||||||
1.将单一的目的DNA条带从聚丙烯酰胺凝胶中切下(尽量切除多余部分)放入干净的离心管(自备)中,称取重量。 | ||||||||
2.将凝胶充分捣碎,向凝胶中加入1-2倍体积的Buffer 2#(如100mg凝胶加入100-200 μl Buffer 2#),75℃孵育30min。 | ||||||||
3.12,000 rpm(~13,400×g)离心1min,小心吸取上清,将之加入过滤柱(过滤柱应预先装入收集管中)中,12,000 rpm离心1min,将离心所得的滤液收集在收集管中。 | ||||||||
4.向滤液中加入3倍体积的Buffer 1#;当回收的目的片段<100 bp时,加入6倍体积的Buffer 1#,上下颠倒混匀。 | ||||||||
注意:此时可以检测其pH值,若pH值大于7.5,可向含有DNA的胶溶液中加10-30 μl 的3 M醋酸钠 (pH 5.0)将pH值调到5-7。 | ||||||||
5.柱平衡:向吸附柱(吸附柱预先装入收集管中)中加入200μl Buffe3#,12,000rpm(~13,400×g)离心2min,倒掉收集管中的废液,将吸附柱重新放回收集管中。 | ||||||||
6.将步骤4中所得溶液加入到吸附柱(吸附柱预先装入收集管中)中,室温放置2min,12,000rpm离心1min,倒掉收集管中的废液,将吸附柱放回收集管中。 | ||||||||
注意:吸附柱容积为700µl,若样品体积大于700µl可分批加入 。 | ||||||||
7.向吸附柱中加入650µl Buffer 4#(使用前请先检查是否已加入无水乙醇),12,000rpm离心1min,倒掉收集管中的废液,将吸附柱放回收集管中。 | ||||||||
注意:如果纯化的DNA用于盐敏感实验(例如平末端连接实验或直接测序),建议加入Buffer4#后静置2-5min再离心。 | ||||||||
8.12,000rpm离心2min,倒掉收集管中的废液。将吸附柱置于室温数分钟,以彻底晾干。 | ||||||||
注意:这一步的目的是将吸附柱中残余的乙醇去除,乙醇的残留会影响后续的酶促反应(酶切、PCR等)。为确保下游实验不受残留乙醇的影响,建议将吸附柱开盖,置于室温放置数分钟,以彻底晾干吸附材料中残余的乙醇。 | ||||||||
9.将吸附柱放到一个新离心管(自备)中,向吸附膜中间位置悬空滴加20µl Buffer 5#(pH 8.5),室温放置2min。12,000rpm离心1min,收集DNA溶液。-20℃保存DNA。 | ||||||||
注意:1)洗脱液的pH值对于洗脱效率有很大影响。若用水做洗脱液,应保证其pH值在7.0-8.5之间(可以用NaOH将水的pH值调到此范围)。 | ||||||||
2)为了提高DNA的回收量,可将离心得到的溶液重新滴加到吸附柱中,重复步骤9。 | ||||||||
3)洗脱体积不应小于30μl,体积过少会影响回收效率。 | ||||||||
4)如果使用TE洗脱,应考虑其中含有的EDTA是否会影响后续的酶促反应。 | ||||||||
5)回收大于10kb的DNA片段时,Buffer 5##应在50℃水浴中预热,适当延长吸附和洗脱时间,可增加回收效率。 |